无花果组培快繁技术研究进展

doi:10.11923/j.issn.2095-4050.cjas2024-0004

农学学报 ›› 2025, Vol. 15 ›› Issue (2): 56-63.doi: 10.11923/j.issn.2095-4050.cjas2024-0004

无花果组培快繁技术研究进展

冯帅帅¹(), 乔峰¹, 贾明²(), 魏娟², 姜婷婷¹, 黄爱玲¹, 金志博³, 央宗¹, 李爱花¹, 韩葳¹, 李全希¹

¹ 淄博市农业科学研究院，山东淄博 255033
² 山东省林业科学研究院，济南 250000
³ 山东新坐标农业开发有限公司，山东淄博 256400

收稿日期:2024-01-12 修回日期:2024-06-26 出版日期:2025-02-20 发布日期:2025-02-18
通讯作者:
贾明，女，1982年出生，山东泰安人，正高级工程师，博士，主要从事特色浆果良种选育、高效生产关键技术、天然产物/生化成分分析等科研与推广工作。通信地址：250014 山东省济南市历下区文化东路42号，Tel：0531-88557772，E-mail：happyjiaming@126.com。
作者简介:
冯帅帅，男，1991年出生，山东济宁人，农艺师，硕士研究生，研究方向：果树育种与高效栽培研究工作。通信地址：255033 淄博市张店区和平街道商场西街197号，Tel：0533-2111645，E-mail：18906480991@163.com。
基金资助:
中央引导地方科技发展资金项目“无花果良种高效栽培与精准采收及制干技术成果转化与应用示范”(YDZX2023098); 山东省重点研发计划农业良种工程“鲜食加工抗病无花果优新品种培育”(2023LZGC016)

Research Progress on Tissue Culture and Rapid Propagation of Ficus carica

FENG Shuaishuai¹(), QIAO Feng¹, JIA Ming²(), WEI Juan², JIANG Tingting¹, HUANG Ailing¹, JIN Zhibo³, YANG Zong¹, LI Aihua¹, HAN Wei¹, LI Quanxi¹

¹ Zibo Academy of Agricultural Sciences, Zibo Shandong 255033
² Shandong Academy of Forestry, Jinan 250014
³ Shandong New Coordinates Agricultural Development Co. Ltd., Zibo Shandong 256400

Received:2024-01-12 Revised:2024-06-26 Online:2025-02-20 Published:2025-02-18

摘要/Abstract

摘要：

为提高无花果繁殖系数，满足推广无花果优良品种的需求，建立有效的无花果离体快繁体系，文章总结了部分无花果离体快繁体系的构建过程，包括外植体的建立、愈伤组织和不定芽的诱导分化、增殖培养和生根培养等阶段，分析了无花果在离体快繁过程中存在的组培苗污染、褐化、玻璃化等问题，并提出针对性的解决措施。同时展望了无花果快繁的应用前景，以期为无花果组培快繁体系的建立及进一步利用提供参考。

关键词: 无花果, 组织培养, 外植体, 愈伤组织

Abstract:

In order to increase the reproduction coefficient of fig (Ficus carica) plants, meet the demand for promoting excellent varieties of figs, and effectively establish an in vitro rapid propagation system for fig plants, this review focused on the progress in research on the fast breeding technology of fig plants. It summarized the construction process of in vitro rapid propagation system, including the establishment of explant cultures, the induction and differentiation of callus tissue and adventitious buds, proliferation culture, and rooting culture. The issues of contamination, browning, and vitrification encountered during the in vitro rapid propagation of fig plants were analyzed, along with targeted measures to address these problems. Additionally, prospects for its rapid propagation and application had been provided, to provide a reference for the establishment of a tissue culture system for fig plants and its further utilization.

Key words: Ficus carica, tissue culture, explant, callus

冯帅帅, 乔峰, 贾明, 魏娟, 姜婷婷, 黄爱玲, 金志博, 央宗, 李爱花, 韩葳, 李全希. 无花果组培快繁技术研究进展[J]. 农学学报, 2025, 15(2): 56-63.

FENG Shuaishuai, QIAO Feng, JIA Ming, WEI Juan, JIANG Tingting, HUANG Ailing, JIN Zhibo, YANG Zong, LI Aihua, HAN Wei, LI Quanxi. Research Progress on Tissue Culture and Rapid Propagation of Ficus carica[J]. Journal of Agriculture, 2025, 15(2): 56-63.

图/表 7

参考文献 60

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品种名	外植体	消毒处理方式	文献
波姬红	幼嫩芽体	先用75%的乙醇浸泡30 s，无菌水冲洗2次，再用2%的次氯酸钠消毒5 min然后0.1% HgCl₂消毒5 min，无菌水冲洗5~6次	[8]
Soltani	茎尖	先用10%次氯酸钠溶液（加2滴吐温-20）浸泡25 min，再用无菌水冲洗3次	[14]
布兰瑞克	茎尖、腋芽茎段	先用70%的乙醇浸泡30 s，再用0.1% HgCl₂消毒8~10 min，无菌水冲洗4~5次	[16]
Conadria	茎尖	依次用0.1%、0.2%、0.3% HgCl₂和4%次氯酸钠溶液消毒3、5、7、9 min，无菌水冲洗5次	[18]
Sabz	薄壁细胞层	先用70%乙醇浸泡1 min，再用漂白溶液（5%有效氯）浸泡20 min，无菌水冲洗3次	[17]
金傲芬	腋芽茎段	先用75%的酒精浸泡30 s，无菌水冲洗1次，再用2%的次氯酸钠浸泡5~10 min，无菌水冲洗5次	[19]
Sultani	叶片	先用0.3% HgCl₂消毒1 min，再用5.25%次氯酸钠消毒20 min （每100 mL消毒溶液中含有1滴吐温-20作为表面活性剂），无菌水彻底冲洗	[36]
Sultany	腋芽茎段	先用20%次氯酸钠消毒20 min，再用70%乙醇消毒1 min，无菌水冲洗3次	[35]
Black Jack	顶芽、腋芽茎段	先用70%乙醇、50%高乐氏消毒液（加2滴吐温-20）混合液洗涤10 min，重复2次，无菌水冲洗8~10次	[43]
BTM 6	顶芽、腋芽茎段	先用70%乙醇浸泡10 min，无菌水冲洗5次，再用70%高乐氏消毒液浸泡10 min，无菌水冲洗5次	[41]
布兰瑞克	腋芽茎段	先用0.1% HgCl₂溶液浸泡10 min，无菌水冲洗3次	[44]
A212	腋芽茎段	用75%乙醇浸泡3~4 s，再用0.1%的HgCl₂溶液中杀菌6~7 min，无菌水冲洗5~6次	[45]
紫色索莱斯	茎尖	先用70%的乙醇消毒5 min，再用25%高乐氏消毒液（加2滴吐温-20）浸泡5 min，无菌水冲洗8次	[10]

品种名	外植体	消毒处理方式	文献
波姬红	幼嫩芽体	先用75%的乙醇浸泡30 s，无菌水冲洗2次，再用2%的次氯酸钠消毒5 min然后0.1% HgCl₂消毒5 min，无菌水冲洗5~6次	[8]
Soltani	茎尖	先用10%次氯酸钠溶液（加2滴吐温-20）浸泡25 min，再用无菌水冲洗3次	[14]
布兰瑞克	茎尖、腋芽茎段	先用70%的乙醇浸泡30 s，再用0.1% HgCl₂消毒8~10 min，无菌水冲洗4~5次	[16]
Conadria	茎尖	依次用0.1%、0.2%、0.3% HgCl₂和4%次氯酸钠溶液消毒3、5、7、9 min，无菌水冲洗5次	[18]
Sabz	薄壁细胞层	先用70%乙醇浸泡1 min，再用漂白溶液（5%有效氯）浸泡20 min，无菌水冲洗3次	[17]
金傲芬	腋芽茎段	先用75%的酒精浸泡30 s，无菌水冲洗1次，再用2%的次氯酸钠浸泡5~10 min，无菌水冲洗5次	[19]
Sultani	叶片	先用0.3% HgCl₂消毒1 min，再用5.25%次氯酸钠消毒20 min （每100 mL消毒溶液中含有1滴吐温-20作为表面活性剂），无菌水彻底冲洗	[36]
Sultany	腋芽茎段	先用20%次氯酸钠消毒20 min，再用70%乙醇消毒1 min，无菌水冲洗3次	[35]
Black Jack	顶芽、腋芽茎段	先用70%乙醇、50%高乐氏消毒液（加2滴吐温-20）混合液洗涤10 min，重复2次，无菌水冲洗8~10次	[43]
BTM 6	顶芽、腋芽茎段	先用70%乙醇浸泡10 min，无菌水冲洗5次，再用70%高乐氏消毒液浸泡10 min，无菌水冲洗5次	[41]
布兰瑞克	腋芽茎段	先用0.1% HgCl₂溶液浸泡10 min，无菌水冲洗3次	[44]
A212	腋芽茎段	用75%乙醇浸泡3~4 s，再用0.1%的HgCl₂溶液中杀菌6~7 min，无菌水冲洗5~6次	[45]
紫色索莱斯	茎尖	先用70%的乙醇消毒5 min，再用25%高乐氏消毒液（加2滴吐温-20）浸泡5 min，无菌水冲洗8次	[10]

品种名	外植体	培养基	生长调节剂/(mg/L)		其他附加物	文献
品种名	外植体	培养基	诱导	增殖	其他附加物	文献
波姬红	幼嫩芽体	MS	6-BA 1.5+ NAA 0.1~0.2	6-BA 1.0+ NAA 0.1~0.2	-	[8]
Soltani	茎尖	MS	6-BA 0.2+ NAA 0.1+ IPA 0.1	6-BA 0.5+ NAA 0.1+ GA₃ 0.1	邻苯三酚90 mg/L	[14]
布兰瑞克	茎尖、腋芽茎段	MS	6-BA 0.1+ NAA 0.2+ GA₃ 0.03	6-BA 1.0+ NAA 0.1	-	[16]
Deanna	茎尖	MS	6-BA 2.5+ GA₃ 0.5	IBA 1.0	维生素C 100 mg/L + 柠檬酸150 mg/L	[18]
布兰瑞克	腋芽茎段、顶芽	MS	6-BA 0.1+ NAA 0.2+ GA₃ 0.03	6-BA 1+ NAA 0.1	-	[22]
金傲芬	腋芽茎段	MS	6-BA 2+ NAA 0.2	6-BA 0.5+ NAA 0.2+ GA₃ 0.2	-	[19]
Dehdez	顶芽、腋芽茎段	MS	Kin 6.0+ NAA 0.2	6-BA 0.5+ 2-iP 0.2	-	[37]
加州黑	顶芽	MS	6-BA 1.0+ NAA 0.5+ GA₃ 1.0	6-BA 1.0+ NAA 0.5+ GA₃ 1.0	-	[35]
棕色土耳其	顶芽	MS	6-BA 2.0+ NAA 0.5+ GA₃ 1.0	6-BA 2.0+ NAA 0.5+ GA₃ 1.0	-	[35]
布兰瑞克	顶芽	MS	6-BA 2.0+ NAA 1.0+ GA₃ 0.5	6-BA 2.0+ NAA 1.0+ GA₃ 0.5	-	[35]
Sultany	顶芽	MS	6-BA 2.5+NAA 1.0+ 2-iP 2.5	6-BA 2.5+ NAA 1.0+ 2-iP 2.5	-	[35]
Black Jack	顶芽、腋芽茎段	WPM	6-BA 4.5+ IAA 1.4	6-BA 4.5	-	[43]
BTM 6	顶芽、腋芽茎段	MS	6-BA 2.0或Zeatin 2.0	6-BA 2.0	-	[41]
布兰瑞克	腋芽茎段	MS	6-BA 0.1+ IBA 1.0+ GA₃ 0.5	6-BA 2.0+ IAA 1.0	-	[44]
A212	腋芽茎段	MS	6-BA 1+ NAA 0.2	6-BA 1+ NAA 0.2	-	[45]
其里干安居尔	顶芽、腋芽茎段	MS	6-BA 1.5+ NAA 0.1+ GA 0.2	6-BA 1.0+ NAA 0.1+ GA 0.2	邻苯三酚100 mg/L	[48]
紫色索莱斯	茎尖	MS	6-BA 5.0	6-BA 5.0	-	[10]

品种名	外植体	培养基	生长调节剂/(mg/L)		其他附加物	文献
品种名	外植体	培养基	诱导	增殖	其他附加物	文献
波姬红	幼嫩芽体	MS	6-BA 1.5+ NAA 0.1~0.2	6-BA 1.0+ NAA 0.1~0.2	-	[8]
Soltani	茎尖	MS	6-BA 0.2+ NAA 0.1+ IPA 0.1	6-BA 0.5+ NAA 0.1+ GA₃ 0.1	邻苯三酚90 mg/L	[14]
布兰瑞克	茎尖、腋芽茎段	MS	6-BA 0.1+ NAA 0.2+ GA₃ 0.03	6-BA 1.0+ NAA 0.1	-	[16]
Deanna	茎尖	MS	6-BA 2.5+ GA₃ 0.5	IBA 1.0	维生素C 100 mg/L + 柠檬酸150 mg/L	[18]
布兰瑞克	腋芽茎段、顶芽	MS	6-BA 0.1+ NAA 0.2+ GA₃ 0.03	6-BA 1+ NAA 0.1	-	[22]
金傲芬	腋芽茎段	MS	6-BA 2+ NAA 0.2	6-BA 0.5+ NAA 0.2+ GA₃ 0.2	-	[19]
Dehdez	顶芽、腋芽茎段	MS	Kin 6.0+ NAA 0.2	6-BA 0.5+ 2-iP 0.2	-	[37]
加州黑	顶芽	MS	6-BA 1.0+ NAA 0.5+ GA₃ 1.0	6-BA 1.0+ NAA 0.5+ GA₃ 1.0	-	[35]
棕色土耳其	顶芽	MS	6-BA 2.0+ NAA 0.5+ GA₃ 1.0	6-BA 2.0+ NAA 0.5+ GA₃ 1.0	-	[35]
布兰瑞克	顶芽	MS	6-BA 2.0+ NAA 1.0+ GA₃ 0.5	6-BA 2.0+ NAA 1.0+ GA₃ 0.5	-	[35]
Sultany	顶芽	MS	6-BA 2.5+NAA 1.0+ 2-iP 2.5	6-BA 2.5+ NAA 1.0+ 2-iP 2.5	-	[35]
Black Jack	顶芽、腋芽茎段	WPM	6-BA 4.5+ IAA 1.4	6-BA 4.5	-	[43]
BTM 6	顶芽、腋芽茎段	MS	6-BA 2.0或Zeatin 2.0	6-BA 2.0	-	[41]
布兰瑞克	腋芽茎段	MS	6-BA 0.1+ IBA 1.0+ GA₃ 0.5	6-BA 2.0+ IAA 1.0	-	[44]
A212	腋芽茎段	MS	6-BA 1+ NAA 0.2	6-BA 1+ NAA 0.2	-	[45]
其里干安居尔	顶芽、腋芽茎段	MS	6-BA 1.5+ NAA 0.1+ GA 0.2	6-BA 1.0+ NAA 0.1+ GA 0.2	邻苯三酚100 mg/L	[48]
紫色索莱斯	茎尖	MS	6-BA 5.0	6-BA 5.0	-	[10]

品种名	外植体	培养基	生长调节剂/(mg/L)		文献
品种名	外植体	培养基	诱导	分化	文献
波姬红	叶片	1/2MS、MS	TDZ 1.0~1.5+ NAA 0.05	6-BA 3.0	[8]
布兰瑞克	茎尖、腋芽茎段	MS	6-BA 6.0~8.0	6-BA 0.5+NAA 0.05+ GA₃1.0	[16]
Sabz	薄壁细胞层	MS	TDZ 9.1+ NAA 9.8	6-BA 17.68+ TDZ 4.54+ NAA 1.07	[17]
布兰瑞克	叶片	MS	6-BA 6.0~8.0+ NAA 0.2~0.4	6-BA 0.5+NAA 0.05+ GA₃1.0	[22]
麦斯衣陶芬	芽、叶	MS	2,4-D 1.0+ TDZ 1.0	2,4-D 1.0+ TDZ 1.0	[48]
Sultani	叶片	MS	KIN 0.2+ 2,4-D 2.0	2-iP 30或TDZ 7.0+ NAA 0.25	[36]
Sultani	叶片	MS	2-iP 4.0+ TDZ 2.0	2-iP 4.0+ TDZ 2.0	[36]
Seungjung Dauphine	叶片	MS	TDZ 0.5或1.0+ IBA 2.0	TDZ 0.5或1.0+ IBA 2.0	[40]

无花果组培快繁技术研究进展

Research Progress on Tissue Culture and Rapid Propagation of Ficus carica

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品种名	外植体	培养基	生长调节剂/(mg/L)	文献
波姬红	不定芽	1/2MS	IBA 1.0	[8]
Soltani	组培苗	1/2MS	IBA 1.0	[14]
布兰瑞克	组培苗	1/2MS	IBA 1.0或NAA 1.0	[16]
Conadria	组培苗	MS	IBA 1.0	[18]
麦斯衣陶芬	组培苗	1/2MS	IBA 0.5	[23]
金傲芬	组培苗	MS	IBA 1.0	[19]
麦斯衣陶芬	组培苗	MS	IBA 1.0	[48]
Sultani	组培苗	MS	IBA 1.0	[36]
加州黑	组培苗	1/2MS	IBA 1.5	[35]
棕色土耳其	组培苗	1/2MS	IBA 2.0	[39]
布兰瑞克	组培苗	1/2MS	IBA 1.5	[35]
布兰瑞克	组培苗	1/2MS	IBA 1.0~1.5	[44]
A212	组培苗	1/2MS	IBA 0.5	[45]
紫色索莱斯	组培苗	WPM	IBA 3.0	[10]

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